D-二聚體（D-Dimer）免疫檢測及其影響因素

D-二聚體是一種可溶性纖維蛋白降解產物，源自纖溶酶介導的交聯纖維蛋白降解。因此，D-二聚體可以被認為是凝血和纖維蛋白溶解激活的生物標志物，通常用于排除靜脈血栓栓塞（VTE）。D-二聚體越來越多地用于評估VTE復發風險，幫助確定VTE患者抗凝治療的最佳持續時間、診斷彌散性血管內凝血以及篩查VTE風險增加的患者。

1.D-二聚體檢測方法

1.1 多克隆抗體檢測

20世紀70年代開發的第一代D-二聚體檢測法，能夠通過多克隆抗體檢測纖維蛋白原和FDP。為了避免血漿中高濃度纖維蛋白原的交叉反應，這種免疫測定只適用于血清樣本；而且服用抗凝劑的患者會出現假陽性結果，在形成凝塊以及降解產物被吸收到凝塊中的樣本會出現假陰性結果。

1.2 單克隆抗體檢測

20世紀80年代初，隨著針對D結構域單克隆抗體的引入，D-二聚體檢測的特異性和靈敏度顯著提高。這代免疫測定可以特異性靶向D-二聚體表位，與FDP和纖維蛋白的非交聯片段的交叉反應性極小，因此可以使用血漿樣本。第一代方法主要以定性乳膠凝集免疫測定法為代表，使用抗體包被的乳膠微粒并需要目視檢查凝集反應。第二代自動化乳膠凝集免疫測定（或乳膠增強免疫比濁測定）通過D-二聚體的聚集率來定量D-二聚體。添加D-二聚體后，乳膠微粒凝集，從而阻止光穿過溶液。光度計測得吸光度的增加與D-二聚體濃度成正比。乳膠增強免疫比濁測定速度快，靈敏度與傳統酶聯免疫吸附測定（ELISA）相當。

1.3 酶聯免疫熒光分析

20 世紀 90 年代中期，bioMérieux開發了一種基于ELISA的熒光終點檢測分析（酶聯免疫熒光分析（ELFA））。該測定顯示出與微孔板ELISA類似的靈敏度和特異性，具有自動化優勢，可以在更短時間（30分鐘）內產生更精確的結果。Vidas^?是臨床上最有效的D-二聚體測量技術，是公認的商業參考方法。

1.4 化學發光酶免疫分析

最近，化學發光酶免疫測定法顯示出與ELISA和乳膠增強免疫比濁測定法相似的敏感性。磁微粒包被特異性D-二聚體單克隆抗體，用異魯米諾標記的抗D-二聚體抗體孵育，產生與D-二聚體濃度成正比的化學發光反應。

1.5 POC D-二聚體檢測

POC D-二聚體測定能夠快速篩查患者的血栓栓塞性疾病，從而緩解急診壓力，且便于農村地區使用。大多數POC檢測使用全血，周轉時間（TAT）短。在血凝試驗中（如：SimplyRED^?），二價抗體對紅細胞和D-二聚體具有特異性。當血液中存在D-二聚體時，紅細胞發生凝集并提供定性結果。基于免疫層析（如Clearview Simplify^?）、熒光（如Vidas^?迷你分析儀、Triage^?、Stratus CS^?）和化學發光（如Pathfast^?）的檢測方法也存在。一些半定量檢測也在使用（如Dade Dimertest，NyoCard^?）。

表1. D-二聚體測定的特點

2.影響D-dimer檢測的因素

2.1 分析前變量

在止血實驗室中大多錯誤與分析前活動有關，分析前錯誤出現的頻率為60-70%，這遠高于分析階段（10-15%）和分析后階段（15-20%）。分析前錯誤主要集中在人工操作環節。

Salvagno等人研究了當地凝血實驗室2年間檢測到的所有分析前錯誤；發現最常見的分析前問題與實驗室未收到樣本（49.3%）、溶血（19.5%）、凝血（14.2%）和樣本量不足有關（13.7%）。Grecu等人研究發現，血液學實驗室分析前錯誤43.2%來源于凝血樣本。Dikmen等人在為期1年的類似研究中，發現拒收樣本主要源于樣本凝固（35%）和體積不足（13%），且凝血測試樣本拒收率（13.3%）高于其他測試（例如生化測試為3.2%，血氣分析為9.8%，尿液分析為9.8%）。

2.1.1 止血帶

止血帶通常用于暫時阻塞靜脈血流，幫助抽血醫生識別靜脈通路。通常建議，針頭進入靜脈或第一根管子開始充滿時，立即取下止血帶，止血帶停留時間不超過1-2分鐘。長時間使用止血帶會引起血液濃縮和形成凝塊，影響凝血檢測結果。Lippi等人觀察到，在靜脈停滯3分鐘后采集的樣本中，D-二聚體值（Mini Vidas^?免疫分析儀）增加13.4%。靜息1分鐘后平均增加7.9%。

2.1.2 抗凝劑

臨床實驗室標準研究所（CLSI）和世界衛生組織（WHO）建議在絕大多數止血測試中使用含有3.2%（105-109 mmol/L）緩沖檸檬酸鈉抗凝劑的采集管，不建議使用肝素化/EDTA等會顯著干擾凝塊測定（例如 PT、APTT、FV、FVIII）的抗凝劑。血液與抗凝劑的推薦比例為9/1，異常抗凝比例通常會延長凝血時間（PT、APTT 和 TT），導致D-二聚體和纖維蛋白原估值偏低。

一些商業化D-二聚體檢測（包括POC檢測）允許使用檸檬酸鹽、肝素化或EDTA血漿（Pathfast^?、Tina-quant^?（羅氏，瑞士）、AQT-90^?（Radiometer，丹麥）、Simplify^?（Agen Inc，澳大利亞）），而其他廠家則建議僅使用檸檬酸鹽抗凝血液（例如 Vidas^?、BCS^?、STA-Liatest^?（Diagnostica Stago，Asnières，法國）、Immulite^?（西門子，美國）。

2.1.3 溶血

體外溶血是臨床實驗室分析前問題最常見的原因之一。患者自身（例如溶血性貧血、代謝紊亂、傳染源）、抽血（例如針頭尺寸、止血帶時間、外傷性抽血、未混合或劇烈混合血管）、樣品運輸（例如PTS、時間、急或重癥監護病房）、處理（例如離心前延遲、樣本重旋、運輸時間/溫度）和儲存（例如溫度和持續時間）都可能造成溶血。CLSI指南H21-A5（血漿凝血試驗和分子止血試驗血液標本的收集、運輸和處理）建議不要使用可見溶血的樣品，因為損傷細胞釋放的促凝因子可能造成實驗偏差。臨床實驗室的大部分溶血標本（±95%）僅為輕度溶血（無細胞血紅蛋白0.3-0.6 g/L）。因此，當游離血紅蛋白濃度低于非干擾限度（即< 3g /L）時，D-二聚體值可能仍然是可靠的。

2.1.4 穩定性與儲存

雖然D-二聚體主要用于急診和快速測量；但當樣品儲存在中心實驗室以及在研究環境中使用時，需要穩定性信息。多項研究表明D-二聚體可能會穩定較長時間，目前建議測試前樣品在室溫（15-25℃）下保存不超過4小時。在許多不同的D-二聚體免疫測定中，D-二聚體在室溫（RT）或2-8℃下可穩定至少24小時（在血漿/全血中）。此外，有研究表明，凍融程序不會顯著影響D-二聚體檢測結果。

2.2 分析變量

2.2.1 方法間差異

D-二聚體檢測目前的主要問題就是免疫測定法之間的高度差異性。這種差異與以下幾個因素有關：1）D-二聚體包含交聯纖維蛋白降解產物的廣泛混合物，2）使用不同的單克隆抗體，3）缺乏國際認證的內控或校準品，以及4）單位和臨床界值的使用差異。

2014年，美國病理學家學會（CAP）凝血資源委員會在一項涉及3800個實驗室的調查中發現，方法間變異系數（CV）高達42%。根據UKNEQAS的四份報告（2017年4月、2017年7月、2017年9月和2018年1月），非FEU和FEU單位的方法間CV（排除異常值后）分別為33.4%、38.2%、41.8%、30.9%和18%、19.3%、17.7%和19%；這四項調查涉及736至752個實驗室。

2.2.2 校準品

校準材料主要通過纖維蛋白凝塊的可控裂解獲得。因此，制造商必須確保裂解是可重復的，以獲得相同大小的降解產物，因為檢測的靈敏度可能會根據高分子量纖維蛋白原（HMWF）或低分子量纖維蛋白原（LMWF）的相對量而變化。D-二聚體測定可用純化的纖維蛋白片段D-二聚體等同物，或根據用于制備校準品的纖維蛋白原量進行校準。

2.3 分析后變量

2.3.1 計量單位

D-二聚體單位根據所用校準品的類型而變化，目前臨床實驗室使用兩種單位：D-二聚體單位（DDU）和纖維蛋白原當量單位（FEU）。FEU將D-二聚體的質量與纖維蛋白原的質量進行比較，校準品是通過纖溶酶降解純化的纖維蛋白原（存在因子XIII的情況下凝固）制備的。DDU是確定的D-二聚體質量，校準品由純化的D-二聚體組成。最近的研究表明，大多數臨床實驗室使用FEU計量，主要測量單位是mg/L，其次是ng/mL。在可用的測量單位中，μg/L（或ng/mL）最接近國際系統（SI）的單位。需要注意的是使用不同的單位（FEU或DDU，以及不同的測量單位）可能會造成混亂，并導致患者的分類錯誤或誤診。

2.3.2 年齡cut off值

D-二聚體值通常隨著年齡的增長而增加，大部分老年患者的D-二聚體水平高于500μg/L FEU的傳統cut off值。現在普遍建議使用年齡調整cut off值（即[年齡調整cut off值，μg/L FEU] = [年齡（歲）×10]）來報告D-二聚體檢測結果。使用特定的年齡cut off值能夠大幅提高陽性預測值（PPV）。

2.3.3 周轉時間

周轉時間（TAT）是D-二聚體報告的一個關鍵方面，因為D-dimer檢測主要用于緊急臨床情況。意大利共識文件推薦總體TAT<1小時，這似乎適用于管理絕大多數緊急測試請求。建議使用線性范圍寬（即高達5000μg/L），且不進行額外稀釋的測定法，以及使用更快且經過驗證的離心過程、氣動管道系統（PTS）或可靠的POC分析儀，以減少TAT。

3. 關于D-二聚體檢測的建議

由于不同的D -二聚體免疫檢測（即形式、抗體）的異質性和缺乏標準化，在實施靜脈血栓栓塞管理策略之前，應評估當地方法的分析和臨床性能。用于排除VTE的cut off值需要在當地確認，根據英國血液學標準委員會指南的建議，使用至少200名受試者。可以使用制造商建議的cut off值，前提是已在其他地方進行了可靠的驗證研究，并且未發現顯著的批間差異。許多檢測方法（例如 Vidas、AxSYM、STA-Liatest）的cut off值已在前瞻性研究中得到臨床驗證。在選擇制造商時，應考慮此因素。另外，制造商應及時了解有關其免疫測定法使用的最新文獻，在需要時更新cut off值。

D-二聚體檢測的是具有不同分子量的交聯纖維蛋白降解產物的混合物，不應與纖維蛋白原或FDP反應。最好也不要與各種酶介導的蛋白水解釋放的纖維蛋白和纖維蛋白原片段反應。

參考文獻

Favresse J, Lippi G, Roy PM, et al. D-dimer: Preanalytical, analytical, postanalytical variables, and clinical applications[J]. Crit Rev Clin Lab Sci, 2018, 55(8): 548-577.

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